小鼠脑组织灌注方法

一、实验前准备

试剂配制

  1.0.01M PBS（pH7.4）：室温/37℃预热，用量20mL/只

  2.4%多聚甲醛（PFA）：PBS配制，4℃预冷，用量20mL/只

  3.麻醉剂：1%戊巴比妥钠，现配现用

器械准备

  眼科剪、眼科镊、止血钳、22-25G磨钝针头、50mL注射器、解剖板、碘伏、医用棉球

二、实验操作步骤

  1.小鼠麻醉：1%戊巴比妥钠腹腔注射，剂量40-60mg/kg，待角膜反射消失、肌肉松弛，确认麻醉成功

  2.固定消毒：小鼠仰卧固定于解剖板，胸部皮肤碘伏消毒

  3.暴露心脏：剑突下剪开皮肤，分离胸肌，沿肋骨剪开胸骨，充分暴露心脏

  4.穿刺固定：左手固定心脏，右手持磨钝针头从左心室心尖斜向头端刺入，止血钳固定针头

  5.排血冲洗：剪开右心耳放血，缓慢推注PBS，直至右心耳流出液清亮、肝脏完全变白

  6.组织固定：换预冷4%PFA缓慢灌注，直至小鼠四肢僵硬、躯干紧绷，停止灌注

  7.取材后固定：快速断头剥离全脑，放入4%PFA，4℃后固定24-48h，备用

三、关键操作参数

  •灌注速度：PBS 5-10mL/min，4%PFA 3-5mL/min

  •灌注总量：每只小鼠PBS、PFA各15-20mL

  •针头要求：必须磨钝，避免刺破心室壁

四、注意事项&故障排除

  1.灌注前注射器、针头彻底排尽气泡，避免空气栓塞

  2.针头误入右心室：立即退针，重新穿刺左心室

  3.流出液持续发红：检查针头位置、扩大右心耳开口，补足PBS灌注量

  4.全程动作轻柔，避免牵拉心脏导致灌注失败

  5.4%PFA具有刺激性，操作时做好防护