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细胞爬片的制作方法

发布日期:2024/10/17 8:25:00来源:http://www.sxyksw.com/news1042882.html

详细介绍

一、玻片的准备

1,爬片可用一般的盖玻片,也可用专用爬片;

2.将剪裁好的爬片,置于浓硫酸中浸泡并过夜,第二天先用自来水冲洗20遍,再用三蒸水冲洗3遍,放在培养皿中烘干后进行高压消毒再烘干。

4.多聚赖氨酸处理玻片,以使细胞与玻片结合更牢。

二、细胞爬片制作

1.胰酶消化细胞后计数重悬细胞于完全培养基中。

2.加细胞时,根据玻片的大小,先在每个孔里准备放爬片的位置滴少量培养基,目的是使玻片与培养皿靠培养基的张力粘合到一起,然后放玻片,防止加细胞悬液时玻片漂起,造成双层细胞贴片。整个过程注意无菌操作。

3.根据自己的需要选择合适的细胞密度种入培养板内即可。

4.待细胞贴壁后,可去上清加含药培养基。

5.按照实验设计,作用一定时间后取玻片。取玻片时由于玻片与培养皿底结合较紧,张力较大,我一般将注射器针头针尖向背面弄个小钩,这样将爬片轻轻勾起,用小镊子取出就可以了。将所需数量的爬片取出时应用酒精灯火焰烧一下针头和镊子。

三、细胞爬片的固定

1.细胞爬片取出后,一般用 PBS洗x2遍,然后再做固定。

2.室温固定15分钟后,弃去固定液,PBS洗3x3min,洗尽液体。

3.换pbs加满六孔板,塑封袋密封后4°送样

四、常用的爬片固定液

(1)多聚甲醛(常用4%):可用于免疫荧光以及TUNEL染色。主要检测组织内一些性能娇弱的抗原特别是细胞表面抗原,室温固定15分钟后,将表面液体吹干,入-20℃保存。

(2)甲醛(福尔马林)应用最广缺点:甲醛放置过久可氧化为甲酸,使溶液 pH 降低,影响染色;分子间交联形成的网格结构可能部分或完全掩盖某些抗原决定簇,使之不能充分暴露。可造成假阴性的染色结果。

(3)冷丙酮可用于一般的免疫组化染色。

(4)95%乙醇,可用于免疫组化。优点:穿透性强、抗原性保存较好。缺点:但醇类对低分子蛋白质、多肽及胞浆内蛋白质保存效果较差,使蛋白变性的作用轻,固定后可再溶解;染色过程中,温育时间长,抗原可流失而减弱反应强度。


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